• Limpie la superficie del absceso o herida con solución salina estéril o alcohol etílico al 70%.
• Si el absceso es cerrado, preferiblemente aspire con aguja la muestra de la base o de la pared de la lesión.
• En caso de absceso abierto, fístula o herida, introduzca un hisopo profundamente dentro de la lesión, sin tocar el área superficial ya que puede introducir en la muestra bacterias que están colonizando la superficie y no están envueltas en el proceso infeccioso.
• De ser necesario, puede refrigerar la muestra hasta por 1 hora antes de ser enviada al laboratorio.
• No envíe solo pus, ya que ésta no es representativa de la lesión. La base y bordes activos de la lesión son más apropiados.

• Anestesie la piel del sitio de la colección y prepare asépticamente el área.
• Inserte una aguja calibre 14 a través de la membrana cricotiroidea.
• Pase un catéter de polietileno calibre 16 a través de la aguja hacia la tráquea inferior. Remueva la aguja.
• Aspire la secreción con una jeringuilla de 20 ml o un succionador.
• Si la secreción es escasa, inyecte lentamente de 2 a 4 ml de solución salina estéril para inducir la tos, lo que usualmente produce una adecuada muestra.
• Envíe el envase colector con el tubo incrustado al laboratorio prontamente, evite la entrada de aire al envase colector.
• No refrigere la muestra.

• Visualice el cérvix utilizando un especulo sin lubricante.
• Limpie el excedente de secreción.
• Remueva la mucosa y secreción del canal con un hisopo y descártelo.
• Con un nuevo hisopo estéril de alginato de calcio, dacrón o algodón no tóxico, obtenga muestra del canal endocervical.
• Cuando se sospecha N. gonorrhoeae, indicarlo en la solicitud.
• No refrigere la muestra, enviar pronto al laboratorio de microbiología.

• Haga que el paciente se enjuague la boca con agua.
• Con ayuda de un nebulizador, haga que el paciente inhale aerosoles de una solución salina estéril al 3-10%.
• Colecte el esputo inducido en un envase estéril.

• Utilizando un depresor lingual presione la lengua hacia abajo para observar los pilares de la faringe y el área tonsilar para localizar el área de inflamación y exudado.
• Utilice un hisopo de alginato de calcio o de Dacrón, rote el mismo sobre el área de exudado, las tonsilas y faringe posterior. No toque el resto del área de la cavidad oral o los dientes. Envíe al laboratorio.
• El cultivo de faringe está contraindicado en pacientes con epiglotis inflamada.

• Desinfecte el tapón de caucho del frasco de hemocultivos con alcohol etílico al 70%. No utilice solución de yodo para limpiar el caucho.
• Asépticamente desinfecte el sitio de la venopunción con alcohol etílico al 70% y luego con una preparación de yodo en círculos concéntricos hacia fuera del sitio elegido. Espere que el yodo seque y realice la punción sin palpar de nuevo.
• Coleccione la muestra de sangre de 0.5 – 2 ml para niños y 5-10 ml para adultos en cada frasco.
• Cada frasco debe ser servido con una punción diferente en diferentes tiempos, a menos que utilice a la vez frascos para organismos aeróbicos y anaeróbicos. Nunca llenar todos los frascos con sangre provenientes de una sola punción.
• No tomar sangre del catéter, a menos que se esté realizando un estudio epidemiológico.

• Coleccione por aspirado vía amniocentesis, cesárea o catéter intrauterino.
• Puede enviar en un tubo estéril o en un sistema de transporte para Anaerobios.

• Desinfecte el área con tintura de yodo al 2%.
• Obtenga la muestra vía aspiración con aguja percutánea. Transporte inmediatamente al laboratorio.
• Puede enviar la muestra para cultivo inoculándola en una botella para hemocultivo. Anótelo en el rótulo.
• Siempre envíe una cantidad apropiada de líquido.
• Nunca envíe la muestra en hisopo.

• Inserte un hisopo humedecido con solución salina estéril +/- 2 cm dentro de la fosa nasal.
• Rote el hisopo contra la mucosa nasal. Colóquelo en un medio de transporte.
• Envíe al laboratorio
• El cultivo de la fosa nasal anterior, solo está reservado para la detección de portadores de Staphylococcus aureus y/o Estreptococos beta hemolíticos o en caso de lesión.
• No refrigere la muestra.

• Utilice un hisopo para colectar muestra para cultivo el cual debe ser colocado inmediatamente en el medio de transporte y otro para frotis, realizar extendido en portaobjetos limpio.
• En el caso de raspado corneal, el método es el mismo, solo que se utiliza una lanceta o aguja estéril para realizar el raspado de la lesión.
• No utilice el término " ojo " u " ocular " para identificar la muestra. Sea más específico al describirla: Secreción conjuntival, secreción corneal, secreción acuosa o vítrea, etc.

Se recomienda recoger la primera orina de la mañana al despertar.

• Lave los genitales con jabón y abundante agua. Secar con un paño limpio.
• Dejar escapar la primera porción de orina y a continuación recoger la muestra directamente en un envase estéril.
• Enviar inmediatamente al laboratorio. Si no se puede, refrigerar la orina hasta por 2 horas.

• Descontamine y anestesie el área de la punción con yodo al 2%
• Introduzca la aguja calibre 22 dentro de la vejiga entre el pubis y el ombligo.
• Aspire alrededor de 20 ml de la vejiga y transfiera la orina asépticamente a un envase estéril o tape la aguja y envíe la jeringa.
• Enviar inmediatamente al laboratorio, o refrigerar.

• Colecte la muestra al menos 1 hora después que el paciente ha orinado.
• Remueva el exudado del orificio uretral.
• Colecte la descarga de material en un hisopo de dacrón o rayón por masaje de la uretra.
• Si no hay descarga, lave la uretra externa con jabón Betadine y enjuague con agua. Inserte un hisopo 2 a 4 cm dentro de la uretra y rote el palillo.
• Envíe la muestra rápidamente al laboratorio.

• Colecte la muestra al menos 1 hora después que el paciente ha orinado.
• Limpie el meato urinario con jabón antiséptico y agua.
• Proceda a masajear la próstata a través del recto.
• Coleccione el fluido en un hisopo estéril de dacrón o rayón.
• Enviar al laboratorio, no refrigere.
• También es muy útil para recuperar gonococos el cultivo de orina después del masaje prostático.

• Colecte la muestra a través de una traqueotomía o tubo endotraqueal.
• Con cuidado pase el catéter de polietileno a través del sitio dentro de la tráquea.
• Aspire el material de la tráquea utilizando una jeringuilla o un succionador intermitente.
• Remueva el catéter y descarte la jeringuilla.
• Envíe al laboratorio.
• No refrigere la muestra.

• Limpie la piel alrededor del catéter con alcohol etílico al 70%.
• Asépticamente remueva el catéter y corte 5 cm de la punta distal y colóquela en un tubo o envase estéril sin medio de cultivo.
• Enviar inmediatamente al laboratorio, si el tiempo de envió es prolongado agregar de 0.5 a 1.0 mL de solución salina estéril al tubo o envase para prevenir la desecación.

No mantener relaciones sexuales 48 horas antes de la toma de muestra.

• Realice una higiene del glande, retraiga el prepucio (piel para atrás).
• A continuación, debe tomar la muestra por masturbación en un frasco estéril. Es importante que recoja todo el volumen del eyaculado en el frasco.
• No refrigere
• Enviar al laboratorio.

• Haga que el paciente se enjuague la boca con agua antes de expectorar, para remover la flora superficial oral.
• Si el paciente tiene dentadura postiza, se la debe quitar.
• Instruya al paciente para que tosa con fuerza y profundo, tal que obtenga un esputo que provenga del tracto respiratorio inferior.
• Depositarlo directamente en un envase estéril. No colecte saliva ni fluido post-nasal.
• Si la muestra no puede ser enviada al laboratorio, una vez tomada puede refrigerarse.

• Coloque la muestra del tamaño de una nuez dentro de un envase limpio, con cierre hermético y no necesariamente estéril.
• No se recomienda el uso de Culturette, salvo para infantes y pacientes con diarrea activa. Si lo utiliza, recolecte más de 2 g de muestra.
• Para estudios por Rotavirus y Clostridium difficile, envíe solo muestra diarreica, y no utilice hisopo.

PIEL Y PELOS, UÑAS

• Tomar la muestra del borde de progresión de la placa sospechosa (zona más activa de la lesión)
• Las lesiones secas se raspan con bisturí, cucharilla o borde del portaobjetos
• Las lesiones húmedas emplear escobillones o torundas estériles
• En el caso de pelos arrancar con pinzas los pelos que se encuentren rotos, de tres a cuatro, raspando también las lesiones escamosas.
• Para uñas recorte del borde extremo, o raspar con bisturí o borde del portaobjetos.
• Hacer caer el material directamente en un frasco estéril. No refrigere.
• Enviar a laboratorio.

• Asépticamente desinfecte con tintura de yodo al 2%.
• Inserte una aguja con estilete en el inter espacio L3-L4, L4-L5 (niños) ó L5-S1.
• Mida la presión del líquido.
• Coleccione de 1 – 3 ml de LCR en tubo estéril previamente rotulado.
• Si no logra obtener suficiente líquido, envíe lo colectado inmediatamente al laboratorio.
• Nunca refrigere.

Colecte el espécimen vía broncoscopio. El cepillado bronquial es preferido al lavado, ya que el lavado es más diluido.

• Anestesie el área con Lidocaína tópica al 2% preferiblemente.
• Haga que el paciente inhale por la boca y exhale por la nariz.
• Lubrique ambas fosas nasales con Xylocaina en jalea.
• El paciente pudiera necesitar Demerol intravenoso para tolerar el broncoscopio.
• Lubrique el broncoscopio con Xylocaina al 2% en jalea, evitando tocar la punta distal.
• Introduzca el broncoscopio intranasalmente.

• Sujete una trampa de Lukens al broncoscopio.
• Introduzca 10 ml de solución salina estéril a través del canal abierto.
• Succione el material desde afuera.
• Selle el tubo de la trampa y envíe al laboratorio.

• Utilice un broncoscopio de doble lumen.
• Inserte la brocha citológica dentro del canal abierto del broncoscopio y avance.
• Empuje la brocha fuera de su protector y realice el cepillado.
• Jale la brocha hacia dentro de su protector y remueva la unidad de brocha completa.
• Coloque la brocha dentro del tubo de transporte conteniendo solución salina o Ringer’s lactato.
• Envíe al laboratorio inmediatamente.

• Lentamente inserte un hisopo de alginato de calcio dentro de la nasofaringe posterior, vía fosas nasales. Puede usar un especulo nasal.
• Rote lentamente el hisopo para absorber secreción, evitando la contaminación con la flora nasal u oral.
• Envíe al laboratorio.

• La muestra debe tomarse por aspirado del tímpano, ya que éste fluido representa el proceso infeccioso, no así la flora del canal externo del oído.
• El hisopo no es recomendado para la colección de muestra para diagnosticar Otitis media, ya que puede contaminarse con la flora externa. Solo en caso de ruptura del tímpano, se puede usar el hisopo para recoger el líquido.
• En éste caso se debe limpiar previamente con un antiséptico el canal del oído externo. Indique en la orden médica si se trata de secreción de oído interno, o externo o líquido de Timpanocentesis. No refrigere la muestra.
• No refrigere la muestra.
• Enviar la muestra rápidamente al laboratorio.

• Limpie la porción del catéter donde se va a tomar la muestra de orina con alcohol etílico al 70 %.
• Inserte la aguja dentro del catéter y colecte la orina dentro de la jeringa.
• Transfiera la orina a un envase estéril.
• Enviar inmediatamente al laboratorio. En caso contrario refrigerar la orina.

• Limpiar y desbridar la superficie de la quemadura antes de proceder a coleccionar la muestra.
• Una pequeña cantidad de tejido puede ser apropiada para el cultivo.
• Si hay supuración utilice un Culturette.
• Solicite cultivo aerobio solamente.
• Enviar al laboratorio, no refrigerar.

• Colecte la muestra al menos 1 hora después que el paciente ha orinado.
• Inserte un hisopo urogenital 2-4 cm dentro del lumen de la uretra. Rote el hisopo.
• Introduzca el hisopo en el medio de transporte.
• Si se sospecha de N. gonorrhoeae indicar en la solicitud.
• Utilice otro hisopo para tomar muestra para el frotis directo, en una laminilla.
• No refrigere la muestra.
• Envíe rápidamente al laboratorio.

• Descarte el exceso de secreciones externas.
• Obtenga la secreción de la mucosa vaginal con un palillo estéril no tóxico o con una pipeta.
• Con otro palillo obtenga una muestra y colóquela en una placa para frotis directo. Esta placa puede servir también para confirmar Vaginosis bacteriana, candidiasis vaginal o Tricomoniasis.